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細胞株構建的核心流程與注意事項及常見問題與解決方案!
小楊 / 2025-04-14 09:23:18

 

百歐博偉生物:細胞株構建是分子生物學和細胞生物學研究中常用的技術手段,主要用于穩(wěn)定表達特定基因(如熒光蛋白、功能蛋白或shRNA等)的細胞系。以下是其核心流程及注意事項:
 
一、細胞株構建核心流程
 
1、實驗設計
 
選擇宿主細胞:根據(jù)實驗目的選擇適合的細胞系(如HEK293、CHO、HeLa等),需考慮細胞的轉染效率、增殖速度和代謝特性。
 
目的基因設計:構建目標基因(如過表達、敲除或突變體),需包含啟動子(如CMV強啟動子)、篩選標記(如Puromycin抗性基因、Neomycin抗性基因)及報告基因(如GFP)。
 
轉染方法選擇:根據(jù)細胞類型選擇脂質(zhì)體轉染、電穿孔、病毒載體(慢病毒/逆轉錄病毒)或CRISPR-Cas9系統(tǒng)。
 
2、載體構建
 
克隆目的基因:將目標基因插入表達載體(如pcDNA3.1、pLVX),通過酶切連接、Gibson組裝或CRISPR定向整合。
 
驗證載體正確性:通過測序、限制性酶切或PCR確認載體結構。
 
3、轉染
 
瞬時轉染:快速驗證基因表達(24-72小時),但無法獲得穩(wěn)定細胞株。
 
穩(wěn)定轉染:
 
將載體導入宿主細胞,隨后通過抗生素篩選(如Puromycin、G418)富集成功整合外源基因的細胞。
 
病毒轉染需先包裝病毒顆粒,再感染靶細胞。
 
4、篩選與單克隆化
 
抗生素篩選:持續(xù)施加選擇性壓力(通常7-14天),淘汰未轉染的細胞。
 
單克隆分離:
 
有限稀釋法:將細胞稀釋至0.5-1個/孔接種于96孔板,確保單克隆來源。
 
流式分選:利用熒光報告基因(如GFP)分選單細胞。
 
擴大培養(yǎng):挑選高表達單克隆擴增至6孔板、培養(yǎng)瓶。
 
5、驗證
 
基因組水平:PCR或qPCR檢測外源基因整合。
 
轉錄水平:RT-qPCR驗證mRNA表達。
 
蛋白水平:Western blot、免疫熒光或流式細胞術檢測目標蛋白表達。
 
功能驗證:根據(jù)基因功能設計實驗(如酶活性檢測、細胞表型分析)。
 
6、擴增與保藏
 
凍存:將驗證后的細胞株分裝凍存于液氮(含10% DMSO的凍存液)。
 
穩(wěn)定性檢測:連續(xù)傳代(如10代以上)后檢測基因表達是否穩(wěn)定。
 
7、表型鑒定(可選)
 
根據(jù)研究目的進行功能分析(如增殖、遷移、凋亡、代謝通路變化等)。
 
二、常見問題與解決方案
 
三、注意事項
 
嚴格無菌操作:避免支原體污染(定期檢測)。
 
單克隆驗證:務必確保單克隆來源,避免混合細胞干擾結果。
 
對照設置:包括空載體對照、未轉染細胞對照及抗生素殺傷曲線實驗。
 
長期穩(wěn)定性:定期復蘇凍存細胞驗證表達一致性。
 
四、應用場景
 
基因功能研究(過表達/敲除)
 
藥物靶點篩選
 
蛋白生產(chǎn)(如CHO細胞生產(chǎn)抗體)
 
疾病模型構建(如腫瘤耐藥株)
 
通過上述流程,可獲得穩(wěn)定、均一的目標細胞株,為后續(xù)研究提供可靠工具。
 
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