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人扁桃體動(dòng)脈內(nèi)皮細(xì)胞分離和培養(yǎng)的注意事項(xiàng)有哪些?
小楊 / 2025-08-20 09:15:53

 

人扁桃體動(dòng)脈內(nèi)皮細(xì)胞的分離和培養(yǎng)對操作精度、環(huán)境控制及細(xì)胞特性維持要求較高,稍不注意可能導(dǎo)致細(xì)胞污染、活性降低或純度不足,以下是關(guān)鍵注意事項(xiàng):
 
一、樣本處理與倫理規(guī)范
 
1、倫理與樣本質(zhì)量
 
必須獲得倫理委員會批準(zhǔn)及患者知情同意,明確樣本來源的合法性(如扁桃體切除術(shù)標(biāo)本需排除傳染性疾?。?/div>
 
樣本需新鮮處理:扁桃體組織離體后應(yīng)在 2 小時(shí)內(nèi)送至實(shí)驗(yàn)室,若延遲需用含雙抗的冰冷 PBS 或培養(yǎng)基保存(4℃,不超過 6 小時(shí)),避免組織缺血壞死影響細(xì)胞活性。
 
2、無菌預(yù)處理
 
組織表面用 75% 酒精快速擦拭消毒(10-15 秒),再用含高濃度雙抗(青霉素 - 鏈霉素終濃度 200 U/mL)的 PBS 反復(fù)沖洗 3-5 次,徹底去除表面血跡、黏液及可能的微生物污染。
 
二、血管分離的關(guān)鍵細(xì)節(jié)
 
1、解剖操作
 
需在解剖顯微鏡下精細(xì)分離動(dòng)脈:扁桃體組織中血管較細(xì),避免誤剪或過度牽拉導(dǎo)致內(nèi)皮細(xì)胞損傷。
 
剝離動(dòng)脈外膜的結(jié)締組織時(shí),盡量保留完整的內(nèi)膜層(內(nèi)皮細(xì)胞位于內(nèi)膜最內(nèi)層),減少雜細(xì)胞(如平滑肌細(xì)胞)混入。
 
2、組織塊大小
 
動(dòng)脈段剪碎至 0.5 mm 左右為宜:過大不利于酶消化,過小可能破壞細(xì)胞完整性。
 
三、酶消化的控制
 
1、消化試劑選擇與濃度
 
優(yōu)先用膠原酶 Ⅰ 或 Ⅱ 型(0.1%-0.2%),避免用胰蛋白酶直接消化組織(易損傷內(nèi)皮細(xì)胞);若后續(xù)傳代用胰酶,需嚴(yán)格控制濃度(0.25%)和時(shí)間。
 
消化液需預(yù)熱至 37℃,避免低溫刺激細(xì)胞。
 
2、消化時(shí)間把控
 
膠原酶消化通常 30-60 分鐘,期間每 15 分鐘輕輕震蕩一次,鏡下觀察組織塊邊緣是否松散(避免過度消化導(dǎo)致細(xì)胞破裂)。
 
終止消化需及時(shí):加入含 10%-20% FBS 的培養(yǎng)基,通過血清中的蛋白酶抑制劑終止酶活性。
 
四、原代培養(yǎng)的環(huán)境優(yōu)化
 
1、培養(yǎng)基與添加劑
 
用內(nèi)皮細(xì)胞專用培養(yǎng)基或添加內(nèi)皮細(xì)胞生長因子(ECGF,10-20 ng/mL)、肝素(50-100 μg/mL)的 DMEM/F12:肝素可抑制平滑肌細(xì)胞等雜細(xì)胞生長,ECGF 促進(jìn)內(nèi)皮細(xì)胞增殖。
 
FBS 需篩選:選擇低內(nèi)毒素批次(<0.1 EU/mL),終濃度 10%-15%(過高易導(dǎo)致雜細(xì)胞過度生長)。
 
2、培養(yǎng)表面處理
 
培養(yǎng)皿需預(yù)包被明膠(0.1%)或纖維連接蛋白(10 μg/mL):內(nèi)皮細(xì)胞依賴基質(zhì)貼壁,未包被表面會導(dǎo)致貼壁率低、細(xì)胞形態(tài)異常。
 
3、培養(yǎng)條件穩(wěn)定
 
incubator 需嚴(yán)格維持 37℃、5% CO?、濕度 95%:溫度波動(dòng) > 1℃或 CO?濃度異常會導(dǎo)致培養(yǎng)基 pH 值改變,影響細(xì)胞存活。
 
原代培養(yǎng)前 24 小時(shí)不換液:避免干擾細(xì)胞貼壁(內(nèi)皮細(xì)胞貼壁較慢,約 6-12 小時(shí)開始貼壁,24 小時(shí)后可見少量貼壁細(xì)胞)。
 
五、純化與雜細(xì)胞去除
 
1、早期污染防控
 
若出現(xiàn)成纖維細(xì)胞(長梭形、排列無序)或平滑肌細(xì)胞(束狀排列)污染,可在傳代時(shí)采用差速貼壁法:將細(xì)胞懸液接種到未包被的培養(yǎng)皿,30 分鐘后將未貼壁細(xì)胞(以內(nèi)皮細(xì)胞為主)轉(zhuǎn)移至新的包被皿中(成纖維細(xì)胞貼壁更快)。
 
避免頻繁操作:原代培養(yǎng)初期細(xì)胞脆弱,過度晃動(dòng)或換液會導(dǎo)致細(xì)胞脫落。
 
2、及時(shí)換液
 
培養(yǎng) 48 小時(shí)后首次換液,徹底去除未貼壁的死細(xì)胞、組織碎片及酶殘留;后續(xù)每 2-3 天換液一次,保持培養(yǎng)基營養(yǎng)充足。
 
六、傳代與凍存注意事項(xiàng)
 
1、傳代時(shí)機(jī)與操作
 
細(xì)胞融合度達(dá) 80%-90% 時(shí)傳代(避免過密導(dǎo)致接觸抑制,影響增殖),傳代比例 1:2 為宜(過高稀釋會延長細(xì)胞恢復(fù)時(shí)間)。
 
胰酶消化時(shí),鏡下觀察到細(xì)胞變圓、間隙增大即可終止(通常 1-2 分鐘),避免消化過度導(dǎo)致細(xì)胞膜損傷;吹打細(xì)胞時(shí)用巴氏吸管輕柔操作,減少機(jī)械損傷。
 
2、凍存與復(fù)蘇
 
凍存液配方:70% 培養(yǎng)基 + 20% FBS+10% DMSO(現(xiàn)配現(xiàn)用,DMSO 需梯度降溫避免細(xì)胞結(jié)晶損傷)。
 
凍存過程:4℃ 30 分鐘→-20℃ 1 小時(shí)→-80℃過夜→轉(zhuǎn)入液氮(長期保存);復(fù)蘇時(shí) 37℃水浴快速解凍(1-2 分鐘),立即加入培養(yǎng)基稀釋 DMSO,離心后重懸接種。
 
七、細(xì)胞鑒定與質(zhì)量控制
 
純度驗(yàn)證
 
傳代 2-3 次后需鑒定:通過免疫熒光檢測 CD31、vWF 等內(nèi)皮細(xì)胞特異性標(biāo)志物(陽性率需≥95%),排除雜細(xì)胞污染。
 
功能驗(yàn)證:進(jìn)行管腔形成實(shí)驗(yàn),確認(rèn)細(xì)胞功能正常。
 
八、其他注意事項(xiàng)
 
操作全程避免引入氣泡:氣泡會破壞細(xì)胞貼壁環(huán)境,導(dǎo)致局部細(xì)胞死亡。
 
避免頻繁觀察:減少培養(yǎng)箱開門次數(shù),維持穩(wěn)定的溫濕度和 CO?濃度。
 
傳代限制:原代內(nèi)皮細(xì)胞通常傳至 5-6 代后會出現(xiàn)衰老、功能下降,建議在 3-4 代內(nèi)使用,或早期凍存保種。
 
通過嚴(yán)格把控以上環(huán)節(jié),可顯著提高人扁桃體動(dòng)脈內(nèi)皮細(xì)胞的分離成功率、純度及活性,為后續(xù)實(shí)驗(yàn)研究提供可靠的細(xì)胞模型。
 
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