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小鼠氣道平滑肌細(xì)胞的分離培養(yǎng)過程中需要注意哪些事項?
小楊 / 2025-12-04 09:22:29

 

小鼠氣道平滑肌細(xì)胞(MASMCs)的分離培養(yǎng)是獲取高純度、高活性細(xì)胞的關(guān)鍵步驟,操作細(xì)節(jié)直接影響細(xì)胞存活率和功能完整性,以下是分階段的核心注意事項:
 
一、實驗前準(zhǔn)備階段
 
1、實驗動物與耗材質(zhì)控
 
選擇 6-8 周齡 SPF 級小鼠(雌雄均可,體重 18-22g),避免老年鼠(氣道纖維化嚴(yán)重,細(xì)胞活性低)或幼鼠(組織量少,分離難度大);實驗前確認(rèn)小鼠無呼吸道感染,處死前禁食 12h(減少腸道污染)。
 
所有耗材(培養(yǎng)皿、離心管、移液管等)需經(jīng)高壓滅菌(121℃、30min)或一次性無菌耗材;手術(shù)器械(眼科剪、鑷、止血鉗)需高溫滅菌后,在 75% 酒精中浸泡備用,使用前用無菌 PBS 沖洗去除酒精殘留。
 
2、試劑配制與預(yù)溫
 
消化液(0.2% 膠原酶 Ⅰ/Ⅳ + 0.25% 胰蛋白酶,按 1:1 體積混合)需現(xiàn)配現(xiàn)用,用無鈣鎂 PBS 配制,經(jīng) 0.22μm 濾膜過濾除菌;培養(yǎng)基(DMEM/F12 + 10% 胎牛血清 + 1% 雙抗)提前 1h 放入 37℃水浴預(yù)熱,避免冷刺激損傷細(xì)胞。
 
全程使用無菌 PBS(含 1% 雙抗),禁止使用含 EDTA 的 PBS(EDTA 會螯合鈣離子,影響平滑肌細(xì)胞貼壁)。
 
二、組織分離階段(無菌操作核心)
 
1、小鼠處死后的組織處理
 
采用頸椎脫臼法處死小鼠,75% 酒精全身浸泡 3-5min(注意避免酒精進(jìn)入氣道),在超凈工作臺內(nèi)解剖,先剪開頸部皮膚暴露氣管,再沿胸骨中線剪開胸腔,完整分離氣管 + 主支氣管(避免連帶肺組織和食管,減少成纖維細(xì)胞污染)。
 
分離的氣道組織立即放入預(yù)冷的無菌 PBS 中反復(fù)漂洗 3 次,去除血漬和殘留組織,修剪掉氣管軟骨環(huán)外側(cè)的結(jié)締組織(成纖維細(xì)胞主要來源),僅保留軟骨環(huán)間的平滑肌層。
 
2、組織剪碎與消化控制
 
將修剪后的氣道組織剪成 1mm³ 左右的小塊(過大會導(dǎo)致消化不充分,過小易損傷細(xì)胞),轉(zhuǎn)移至含消化液的離心管中,37℃恒溫?fù)u床(100rpm)消化 40-60min,期間每 15min 輕搖一次,觀察組織塊是否變透明(消化過度會導(dǎo)致細(xì)胞破裂,不足則細(xì)胞難以脫落)。
 
消化終止:加入等體積含血清的培養(yǎng)基(血清中胰酶抑制劑可終止消化),用巴氏吸管輕輕吹打組織塊,使細(xì)胞脫落,避免劇烈吹打(破壞平滑肌細(xì)胞的梭形結(jié)構(gòu))。
 
三、細(xì)胞純化與接種階段
 
1、離心與過濾
 
消化后的細(xì)胞懸液經(jīng) 200 目無菌尼龍網(wǎng)過濾(去除未消化的組織塊和軟骨碎片),1000rpm、室溫離心 5min(轉(zhuǎn)速過高易擠壓細(xì)胞,過低則細(xì)胞沉淀不充分),棄上清后用預(yù)溫的完全培養(yǎng)基重懸細(xì)胞沉淀。
 
2、接種與貼壁控制
 
按 1×10? cells/cm² 密度接種于明膠包被的培養(yǎng)皿(0.1% 明膠 37℃包被 1h,吸棄后使用,增強(qiáng)平滑肌細(xì)胞貼壁能力),避免接種密度過高(易導(dǎo)致成纖維細(xì)胞過度增殖)或過低(細(xì)胞自分泌因子不足,存活率低)。
 
接種后將培養(yǎng)皿輕晃使細(xì)胞均勻分布,立即放入 37℃、5% CO?培養(yǎng)箱,前 24h 禁止移動或換液(平滑肌細(xì)胞貼壁慢,擾動會導(dǎo)致貼壁失?。?/div>
 
四、培養(yǎng)與傳代階段
 
1、換液與污染監(jiān)測
 
接種 24h 后首次換液,吸棄上清(去除未貼壁的死細(xì)胞和紅細(xì)胞),加入新鮮完全培養(yǎng)基;后續(xù)每 2-3 天換液一次,換液時沿培養(yǎng)皿壁緩慢加液,避免直沖細(xì)胞層。
 
每日觀察細(xì)胞狀態(tài):正常 MASMCs 為梭形,貼壁生長,若出現(xiàn)圓形懸浮細(xì)胞(死細(xì)胞)、培養(yǎng)基渾濁(細(xì)菌污染)或絮狀沉淀(真菌污染),立即丟棄,避免污染擴(kuò)散。
 
2、傳代時機(jī)與操作
 
待細(xì)胞融合至 80%-90% 時傳代(融合過度易導(dǎo)致細(xì)胞接觸抑制,失去平滑肌細(xì)胞特性),優(yōu)先選擇第 1-3 代細(xì)胞(傳代超過 3 代后,α-SMA 表達(dá)下降,功能喪失)。
 
傳代時用 0.25% 胰蛋白酶(不含 EDTA)消化,37℃孵育 1-2min,鏡下觀察細(xì)胞回縮變圓后立即終止消化;傳代比例 1:2,避免 1:3 以上稀釋(細(xì)胞密度過低,增殖速度減慢)。
 
五、其他關(guān)鍵注意事項
 
無菌操作貫穿全程:超凈工作臺使用前紫外照射 30min,操作時佩戴無菌手套、口罩,避免說話或咳嗽;所有操作在酒精燈火焰旁進(jìn)行,禁止徒手接觸無菌耗材內(nèi)壁。
 
溫度與 pH 控制:全程保持試劑和操作環(huán)境溫度(37℃),培養(yǎng)基 pH 維持在 7.2-7.4(過酸或過堿會抑制細(xì)胞活性),CO?濃度嚴(yán)格控制在 5%(濃度過高導(dǎo)致培養(yǎng)基酸化)。
 
細(xì)胞純度驗證:培養(yǎng)后需通過免疫熒光檢測 α-SMA(平滑肌特異性標(biāo)志物),確保細(xì)胞純度>90%;若成纖維細(xì)胞污染(形態(tài)為扁平多角形),可通過差速貼壁法純化(成纖維細(xì)胞貼壁快,接種 1h 后吸棄上清,轉(zhuǎn)移未貼壁的平滑肌細(xì)胞至新培養(yǎng)皿)。
 
避免反復(fù)凍融:原代分離的細(xì)胞盡量新鮮使用,如需凍存,選擇第 2 代對數(shù)生長期細(xì)胞,凍存液(培養(yǎng)基:血清:DMSO=7:2:1)緩慢降溫(4℃ 30min→-20℃ 1h→-80℃過夜→液氮保存),復(fù)蘇時快速 37℃水浴融化,減少 DMSO 損傷。
 
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