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細(xì)胞實驗如何選擇培養(yǎng)基和進(jìn)行換液操作的詳細(xì)指南!
小楊 / 2025-06-20 10:21:04

 

百歐博偉生物:在細(xì)胞實驗中,“選細(xì)胞液”通常指的是選擇適合你培養(yǎng)細(xì)胞的培養(yǎng)基(Cell Culture Medium),而“換液”(Media Change)則是更換培養(yǎng)容器中舊培養(yǎng)基為新培養(yǎng)基的過程。這兩者緊密相關(guān),選擇正確的培養(yǎng)基是換液操作的基礎(chǔ)和前提。以下是如何選擇培養(yǎng)基和進(jìn)行換液操作的詳細(xì)指南:
 
一、如何選擇培養(yǎng)基(“細(xì)胞液”)
 
選擇培養(yǎng)基是細(xì)胞培養(yǎng)成功的關(guān)鍵第一步。沒有“萬能”的培養(yǎng)基,選擇取決于:
 
細(xì)胞類型:
 
細(xì)胞來源物種:人源、小鼠、大鼠等。
 
細(xì)胞種類:是原代細(xì)胞(直接從組織分離)還是已建立的細(xì)胞系?是貼壁細(xì)胞還是懸浮細(xì)胞?是正常細(xì)胞還是癌細(xì)胞?是干細(xì)胞還是分化細(xì)胞?
 
查找文獻(xiàn)/數(shù)據(jù)庫:
 
查閱文獻(xiàn):查找研究同類型細(xì)胞的已發(fā)表論文,看他們使用什么培養(yǎng)基。
 
ATCC/DSMZ/ECACC等細(xì)胞庫:這些權(quán)威機(jī)構(gòu)會為它們保存的每一株細(xì)胞提供詳細(xì)的培養(yǎng)條件說明,包括推薦的培養(yǎng)基、血清類型和濃度、添加劑等。這是最可靠的信息來源!
 
基礎(chǔ)培養(yǎng)基種類:
 
DMEM (Dulbecco's Modified Eagle Medium):應(yīng)用最廣泛的基礎(chǔ)培養(yǎng)基之一,適用于多種貼壁細(xì)胞。有高糖(4500mg/L)和低糖(1000mg/L)版本,高糖更常用。
 
MEM (Minimum Essential Medium):歷史悠久的培養(yǎng)基,成分相對簡單,適用于多種細(xì)胞。
 
RPMI-1640 (Roswell Park Memorial Institute 1640):最初為淋巴細(xì)胞設(shè)計,現(xiàn)在廣泛用于懸浮細(xì)胞和某些貼壁細(xì)胞。
 
IMDM (Iscove's Modified Dulbecco's Medium):在DMEM基礎(chǔ)上改良,血清需求較低,常用于造血細(xì)胞、雜交瘤細(xì)胞等。
 
Ham's F12 / DMEM-F12:Ham's F12營養(yǎng)豐富,常與DMEM混合成DMEM/F12 (1:1),適用于原代細(xì)胞、干細(xì)胞(如神經(jīng)干細(xì)胞)、轉(zhuǎn)染效率要求高的實驗等。
 
McCoy's 5A:適用于多種原代細(xì)胞和癌細(xì)胞系(如卵巢癌細(xì)胞)。
 
Stem Cell專用培養(yǎng)基:專為維持胚胎干細(xì)胞或誘導(dǎo)多能干細(xì)胞未分化狀態(tài)設(shè)計,成分明確,通常不含血清。
 
無血清培養(yǎng)基:成分明確,不含動物來源成分,用于需要精確控制培養(yǎng)條件、減少批次差異、下游應(yīng)用或研究特定因子作用的實驗。需要添加特定的生長因子、激素、載體蛋白等。
 
血清:
 
類型:胎牛血清是最常用的(FBS/FCS),提供豐富的生長因子、激素、粘附因子、營養(yǎng)物質(zhì)。有時也使用新生牛血清、馬血清等。
 
濃度:通常添加5%-20%,最常見是10%。濃度過高可能促進(jìn)分化或抑制某些細(xì)胞生長;過低則可能無法支持細(xì)胞良好生長。必須參考細(xì)胞庫或文獻(xiàn)的具體推薦。
 
批次:血清是天然產(chǎn)物,批次間差異顯著。強(qiáng)烈建議:
 
預(yù)先測試:對新批次血清進(jìn)行細(xì)胞生長曲線、克隆形成率等測試。
 
大量購買同一批次:一旦選定合適批次,盡量購買足夠長時間使用的量。
 
熱滅活:56°C水浴30分鐘,滅活補(bǔ)體。并非所有細(xì)胞都需要!僅在特定實驗(如免疫學(xué)研究、某些病毒培養(yǎng)、或已知該批次血清對細(xì)胞有毒性時)進(jìn)行。熱滅活會損失部分生長因子。
 
添加劑:
 
抗生素:常用青霉素-鏈霉素雙抗(Pen-Strep),濃度通常為50-100 U/mL青霉素 + 50-100 µg/mL鏈霉素。用于防止細(xì)菌污染。注意: 長期使用抗生素可能掩蓋低水平污染或誘導(dǎo)細(xì)胞抗性。無菌操作熟練后,可在某些實驗(如原代培養(yǎng)、轉(zhuǎn)染前)考慮不加。
 
抗真菌劑:如兩性霉素B、制霉菌素等,僅在懷疑或處理真菌污染時短期使用,對細(xì)胞可能有毒性。
 
L-谷氨酰胺:細(xì)胞重要碳源和氮源,不穩(wěn)定(在4°C和37°C下會降解)?;A(chǔ)培養(yǎng)基中通常已含,但需注意有效期。使用時額外添加(終濃度2-4mM)或使用穩(wěn)定的GlutaMAX添加劑。
 
HEPES緩沖液:在CO2培養(yǎng)箱環(huán)境外提供更好的pH緩沖能力(如顯微鏡觀察、操作時間較長時),常用濃度10-25mM。
 
丙酮酸鈉:能量來源,對某些細(xì)胞有益。
 
非必需氨基酸:補(bǔ)充營養(yǎng)。
 
β-巰基乙醇:抗氧化劑,常用于雜交瘤和干細(xì)胞培養(yǎng)。
 
特定生長因子/細(xì)胞因子:在無血清或低血清培養(yǎng)中尤其重要。
 
實驗?zāi)康模?/strong>
 
維持培養(yǎng):選擇能支持細(xì)胞穩(wěn)定增殖的標(biāo)準(zhǔn)培養(yǎng)基。
 
誘導(dǎo)分化:需要換成特定的分化培養(yǎng)基(成分不同,常不含或含低濃度血清,添加特定誘導(dǎo)因子)。
 
轉(zhuǎn)染:某些培養(yǎng)基血清和蛋白含量低,可提高轉(zhuǎn)染效率。轉(zhuǎn)染后需要換回完全培養(yǎng)基。
 
藥物處理/刺激實驗:可能需要使用無血清或低血清培養(yǎng)基一段時間(血清饑餓同步化),以減少血清中未知因子的干擾。處理時也常在無/低血清培養(yǎng)基中進(jìn)行。
 
收集上清/條件培養(yǎng)基:可能需要使用無血清培養(yǎng)基。
 
凍存細(xì)胞:需要使用專門的凍存培養(yǎng)基(通常含高濃度血清和DMSO)。
 
總結(jié)選擇步驟:
 
明確你的細(xì)胞類型。
 
查詢ATCC/DSMZ/ECACC等數(shù)據(jù)庫或相關(guān)文獻(xiàn)推薦的培養(yǎng)基、血清濃度及關(guān)鍵添加劑。
 
根據(jù)實驗?zāi)康模ňS持、分化、處理等)判斷是否需要調(diào)整基礎(chǔ)培養(yǎng)基或添加劑(如換無血清、去除抗生素等)。
 
購買高質(zhì)量、信譽(yù)好的品牌培養(yǎng)基和血清。
 
對新批次血清進(jìn)行必要的細(xì)胞生長測試(強(qiáng)烈推薦)。
 
嚴(yán)格記錄使用的培養(yǎng)基品牌、貨號、批號、血清批號、所有添加劑濃度及配制日期。這對實驗可重復(fù)性至關(guān)重要!
 
二、如何進(jìn)行細(xì)胞換液
 
換液是為了:
 
去除細(xì)胞代謝廢物(乳酸、氨等)。
 
補(bǔ)充消耗殆盡的營養(yǎng)物質(zhì)(葡萄糖、氨基酸、生長因子等)。
 
維持穩(wěn)定的pH值(培養(yǎng)基中的緩沖系統(tǒng)會被代謝物影響)。
 
去除死細(xì)胞碎片。
 
在特定實驗中引入或去除某些因子。
 
換液頻率:
 
取決于細(xì)胞生長速度、接種密度、培養(yǎng)基體積。通常貼壁細(xì)胞每2-3天換液一次,快速生長的細(xì)胞可能需要每天換液。
 
觀察是關(guān)鍵!培養(yǎng)基顏色是重要指標(biāo):
 
鮮紅/橙紅色(酚紅指示劑):pH正常(~7.4)。
 
黃色:變酸(pH下降),通常由于代謝廢物積累(乳酸),說明急需換液。
 
紫紅色:變堿(pH升高),較少見,可能由污染或過度通氣引起。
 
細(xì)胞密度過高時也需要更頻繁換液。
 
標(biāo)準(zhǔn)換液操作步驟(以貼壁細(xì)胞為例):
 
準(zhǔn)備:
 
將新鮮完全培養(yǎng)基放入37°C水浴鍋中預(yù)熱(至少15-30分鐘,冷培養(yǎng)基會“熱休克”細(xì)胞)。避免長時間水浴增加污染風(fēng)險。
 
預(yù)熱PBS(用于清洗,如果實驗需要或細(xì)胞敏感)。
 
準(zhǔn)備好無菌移液管、廢液缸、75%酒精噴壺、記號筆。
 
在超凈工作臺內(nèi)進(jìn)行所有操作,臺面用酒精擦拭消毒。
 
戴上手套,并用酒精消毒手套。
 
取出細(xì)胞:
 
從CO2培養(yǎng)箱中小心取出培養(yǎng)瓶/皿/板,避免劇烈晃動。
 
在顯微鏡下快速觀察細(xì)胞狀態(tài)(形態(tài)、密度、污染跡象)。
 
移除舊培養(yǎng)基:
 
輕柔操作!避免吸頭觸碰到細(xì)胞層,尤其是貼壁不牢的細(xì)胞。
 
打開培養(yǎng)器皿蓋子(在酒精燈火焰旁操作以減少污染風(fēng)險)。
 
用無菌移液管(或真空泵連接無菌吸管)小心地從培養(yǎng)器皿的一角(貼壁細(xì)胞)或邊緣(懸浮細(xì)胞離心后)吸出舊培養(yǎng)基,棄入廢液缸。
 
關(guān)鍵:不要直接傾倒!容易導(dǎo)致細(xì)胞脫落或污染。
 
(可選)清洗細(xì)胞:
 
對于代謝廢物多、需要精確去除血清/藥物、或細(xì)胞敏感的情況:
 
向培養(yǎng)器皿中加入少量預(yù)熱的無菌PBS(足以覆蓋細(xì)胞層即可)。
 
輕輕搖晃,洗滌細(xì)胞表面。
 
完全吸棄 PBS。可重復(fù)一次。
 
注意:頻繁清洗或PBS殘留可能對某些細(xì)胞有損傷,非必需步驟可省略。
 
加入新培養(yǎng)基:
 
取預(yù)熱的新鮮完全培養(yǎng)基,沿培養(yǎng)器皿壁緩慢加入,避免直接沖擊細(xì)胞層。
 
加入適量體積(通常與原體積相同,或根據(jù)實驗需求調(diào)整)。培養(yǎng)瓶要保證能形成足夠的氣液接觸面。
 
放回培養(yǎng)箱:
 
蓋緊蓋子(培養(yǎng)瓶需擰松約1/4圈以保證氣體交換)。
 
做好標(biāo)記(換液日期、操作者)。
 
平穩(wěn)放回37°C, 5% CO2,飽和濕度的培養(yǎng)箱中。
 
針對懸浮細(xì)胞的換液:
 
將細(xì)胞懸液連同舊培養(yǎng)基一起轉(zhuǎn)移到無菌離心管中。
 
在室溫或4°C下進(jìn)行低速離心(根據(jù)細(xì)胞類型調(diào)整,通常200-400g,5分鐘)。目的是沉淀細(xì)胞,避免過度離心損傷細(xì)胞。
 
小心吸棄上清(舊培養(yǎng)基),避免吸到細(xì)胞沉淀。
 
用少量預(yù)熱的新鮮完全培養(yǎng)基或PBS(如果需要清洗)輕柔重懸細(xì)胞沉淀。
 
再次離心(如果需要清洗)。
 
吸棄上清(或清洗液)。
 
用適量預(yù)熱的新鮮完全培養(yǎng)基輕柔重懸細(xì)胞。
 
將細(xì)胞懸液轉(zhuǎn)移回原培養(yǎng)器皿或新的培養(yǎng)器皿中(如果傳代或擴(kuò)增)。
 
放回培養(yǎng)箱。
 
關(guān)鍵注意事項:
 
無菌!無菌!無菌!這是細(xì)胞培養(yǎng)的生命線。所有操作在超凈臺進(jìn)行,物品表面和手部用酒精消毒,正確使用火焰,避免在開放區(qū)域長時間暴露。
 
輕柔操作:避免劇烈搖晃、吹打、移液沖擊細(xì)胞,尤其是貼壁細(xì)胞和原代細(xì)胞。
 
溫度:培養(yǎng)基和PBS必須預(yù)熱到37°C。冷熱應(yīng)激會嚴(yán)重?fù)p傷細(xì)胞。
 
避免過度換液/清洗:不必要的操作增加污染風(fēng)險和細(xì)胞應(yīng)激。
 
觀察記錄:每次換液前后觀察細(xì)胞形態(tài)和密度,記錄任何異常(顆粒、渾濁、pH異常、細(xì)胞形態(tài)改變)。
 
血清批次一致性:不同批次血清差異大,盡量使用同一批次,更換批次前務(wù)必測試。
 
培養(yǎng)基有效期:注意基礎(chǔ)培養(yǎng)基、谷氨酰胺、添加物等的有效期。配制好的完全培養(yǎng)基通常在2-4周內(nèi)使用(4°C避光保存),谷氨酰胺最好現(xiàn)加現(xiàn)用或使用GlutaMAX。
 
常見錯誤:
 
使用未預(yù)熱的培養(yǎng)基/PBS。
 
移液時吸頭碰到細(xì)胞層導(dǎo)致細(xì)胞脫落。
 
直接傾倒舊培養(yǎng)基導(dǎo)致細(xì)胞損失或污染。
 
換液頻率不當(dāng)(太頻繁浪費且應(yīng)激,太少細(xì)胞狀態(tài)差)。
 
忽略細(xì)胞庫/文獻(xiàn)推薦的培養(yǎng)基配方。
 
未測試新批次血清。
 
無菌操作不規(guī)范。
 
結(jié)論:
 
選擇合適的培養(yǎng)基是細(xì)胞實驗的基石,需要根據(jù)細(xì)胞類型和實驗?zāi)康淖屑?xì)查詢和驗證。換液是常規(guī)但至關(guān)重要的操作,必須嚴(yán)格遵守?zé)o菌和輕柔的原則,并注意溫度控制和觀察記錄。熟練掌握這兩項技能是獲得可靠、可重復(fù)的細(xì)胞實驗結(jié)果的基本保障。
 
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