1、不要在細(xì)胞狀態(tài)不好時,進(jìn)行細(xì)胞凍存。如,長的太過了,培養(yǎng)液已經(jīng)很黃了;細(xì)胞可疑污染;細(xì)胞已經(jīng)開始凋亡或崩解;連續(xù)培養(yǎng)超過二個月,細(xì)胞性狀已有改變。應(yīng)該在增殖旺盛,情況穩(wěn)定,實(shí)驗(yàn)效果良好,復(fù)蘇后兩周內(nèi)進(jìn)行細(xì)胞凍存。
2、凍存時細(xì)胞濃度低于1-5 ×106個/ml,很難復(fù)蘇成功,應(yīng)該離心后調(diào)整細(xì)胞濃度。
3、一定要選擇原配的管子和蓋子(不同牌子/型號的顏色會有差別),凍存管的蓋子一定要擰緊,否則復(fù)蘇水浴時會滲水,造成污染。
4、盡量選擇程序冷凍盒進(jìn)行細(xì)胞凍存。如果沒有,應(yīng)選擇厚壁泡沫塑料盒,或塞入大量干棉花。防止放在-80℃的凍存盒,壁太薄,細(xì)胞被迅速降溫。確?!熬徑怠?。
5、凍存的細(xì)胞應(yīng)盡快轉(zhuǎn)入液氮,不要在-80℃冰箱放置超過一個月。
6、防止找不到或拿錯細(xì)胞,每只凍存管都應(yīng)標(biāo)上細(xì)胞的名稱,凍存時間,并記錄在冊。
7、取細(xì)胞時應(yīng)做好防護(hù)措施,帶好防凍手套,護(hù)目鏡。細(xì)胞凍存管可能漏入液氮,解凍時凍存管中的氣溫急劇上升,可導(dǎo)致爆炸。
8、必須在1-2min內(nèi)使凍存液完全融化,復(fù)蘇溫度太慢,會造成細(xì)胞的損傷。如果凍存管的壁較厚,隔熱效果較好,可以適當(dāng)提高水浴溫度(37℃~40℃)。二甲亞砜(DMSO)最好選擇進(jìn)口產(chǎn)品。
9、提前預(yù)定超凈臺,減少復(fù)蘇后插在冰盒里等待的時間。復(fù)蘇后長時間(1h),還沒有加入新的培養(yǎng)液。高濃度DMSO防止胞內(nèi)形成冰晶,凍存時保護(hù)細(xì)胞,但復(fù)蘇溶解后,浸泡時間太久會對細(xì)胞有毒性。
10、關(guān)于細(xì)胞溶解后,是否需要離心的問題,需要根據(jù)特定的細(xì)胞情況而定。主要有兩種方式。一種是解凍后的細(xì)胞懸液直接吹打均勻后分裝到培養(yǎng)瓶中進(jìn)行培養(yǎng),第二天換液(后貼壁后即換液)。因?yàn)殡x心的目的是兩個,去除DMSO,去除死細(xì)胞,這個是標(biāo)準(zhǔn)流程。但對一般人來說,把握不好離心轉(zhuǎn)速和時間,轉(zhuǎn)的不夠活細(xì)胞沉底的少,細(xì)胞就全被扔掉了,轉(zhuǎn)過了活細(xì)胞會受壓過大,死亡。此外在操作過程中容易污染。另一種是須離心后,將凍存液倒干凈,且一定要倒干凈。
11、對于不離心直接加入培養(yǎng)基培養(yǎng)的方法,培養(yǎng)基的加入量是個需要考慮的問題。主要涉及DMSO的濃度,如果你加入培養(yǎng)基太少,DMSO的濃度就會比較大,影響細(xì)胞生長。而加入培養(yǎng)基太多,又會影響細(xì)胞的貼壁效果。
12、DMSO的濃度在小于5%(也有說1%)的時候?qū)σ话慵?xì)胞沒有什么影響。所以如果你的凍存液的濃度是10%DMSO,那么1ml的細(xì)胞加入10ml以上的培養(yǎng)基就恰好稀釋到了無害濃度。
13、有些細(xì)胞復(fù)蘇后一星期才有起色,切忌要有耐心,不要換液,耐心等待,兩周后再做決定。不要復(fù)蘇三四天后,細(xì)胞沒有任何動靜,認(rèn)為失敗,倒掉所有細(xì)胞。
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