一、實驗步驟
1、分離
用PBS清洗脂肪組織，并將組織放在冰上的培養(yǎng)皿中，用剪刀將組織切成小塊（約3-5mm）。
將切碎的組織轉(zhuǎn)移到含有7mL冰冷消化緩沖液的10mL圓底管中，此操作需一直保持在冰上。對于>1g的脂肪，將組織切碎并轉(zhuǎn)移到含有10mL冰冷消化緩沖液的50mL錐形管中。
加入1mL（如脂肪組織重量>1g則可以增加至1.5mL）10× 膠原酶緩沖液，并加入消化緩沖液使得膠原酶的最終濃度為1mg/mL。
在37°C下孵育半小時，且使試管劇烈搖晃。每10分鐘大力搖動試管，可獲得更高的細(xì)胞產(chǎn)量。30分鐘后，取10μL產(chǎn)物進(jìn)行顯微鏡觀察，此時，脂肪細(xì)胞應(yīng)顯示為大的單細(xì)胞，白細(xì)胞和其他基質(zhì)細(xì)胞會小得多。如果白細(xì)胞仍附著在脂肪細(xì)胞上，則應(yīng)繼續(xù)消化；如果沒有，請繼續(xù)下一步。
消化后，將EDTA添加到10 mM的最終濃度，并在37°C下再孵育10分鐘。
2、過濾
用 PBS預(yù)濕100 μm尼龍過濾器，然后放置在50mL錐形管上。使用移液管，將前述樣本的細(xì)胞沉淀先轉(zhuǎn)移到過濾器上過濾，然后再過濾含有脂肪細(xì)胞的上層。
加入10 ml FACS 緩沖液輕輕清洗過濾器兩次。
3、離心
在4 °C下以500×g 離心10分鐘以分離脂肪細(xì)胞和巨噬細(xì)胞。離心后，脂肪細(xì)胞在頂部形成白色層，而巨噬細(xì)胞等其它細(xì)胞在管底部形成紅色或白色沉淀。
輕輕吸出并丟棄脂肪細(xì)胞和上清液。此時，含有巨噬細(xì)胞的團(tuán)塊很容易受到干擾，因此應(yīng)格外小心。
4、獲取巨噬細(xì)胞
通過輕彈試管將沉淀重懸于0.5 mL紅細(xì)胞裂解液中。在室溫下孵育5分鐘，偶爾輕輕搖晃。
通過添加5 mL FACS緩沖液，中和紅細(xì)胞裂解作用。
在4 °C下以500×g 離心10分鐘。
在3—5 mL FACS緩沖液中重懸細(xì)胞沉淀并在冰上孵育。
5、巨噬細(xì)胞計數(shù)
將10 μL每個樣品1:1與臺盼藍(lán)溶液混合。使用血細(xì)胞計數(shù)板仔細(xì)計數(shù)活細(xì)胞。根據(jù)計數(shù)得到的細(xì)胞數(shù)量，結(jié)合獲得的樣本總體積，可計算出每份脂肪組織巨噬細(xì)胞產(chǎn)量。典型的產(chǎn)量：瘦小鼠一般為1-3×1000000個細(xì)胞/g脂肪，肥胖小鼠一般為2-5×1000000個細(xì)胞/g脂肪。
二、注意事項
1、盡可能切碎組織，在消化過程中頻繁手動搖動增加接觸面積。
2、膠原酶消化脂肪組織時，碎組織大小、搖動強(qiáng)度和孵育時間是關(guān)鍵參數(shù)，應(yīng)對其進(jìn)行優(yōu)化，以最大限度地提高從脂肪提取巨噬細(xì)胞的產(chǎn)量。
3、膠原酶的消化時間應(yīng)根據(jù)每批膠原酶分別進(jìn)行優(yōu)化。增加膠原酶緩沖液中的孵育時間，尤其是超過1小時，會顯著降低細(xì)胞產(chǎn)量并增加細(xì)胞死亡幾率。
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